СВЕТОМИКРОСКОПИЧЕСКАЯ ВИЗУАЛИЗАЦИЯ НАДЭПИТЕЛИАЛЬНОГО СЛОЯ ПЕРЕДНЕГО ЭПИТЕЛИЯ РОГОВИЦЫ SUS SCROFA DOMESTICUS

Согласно данным электронной микроскопии препаратов химически фиксированного материала, поверхность переднего эпителия роговицы формируют мириады микроворсинок. Выравнивание поверхности переднего эпителия относят к функции слезной пленки. В качестве доказательства, подтверждающего существование слезной пленки, приводят интерференционные картины, наблюдаемые на поверхности роговицы. Этот оптический феномен объясняют отражением света от передней и задней поверхности липидного слоя слезной пленки. На гистологических препаратах криофиксированного in vivo материала слезную пленку идентифицируют с гомогенным материалом над микроворсинками плоских клеток третьего слоя переднего эпителия. Предполагают, что мембраноподобная структура на поверхности гомогенного материала может соответствовать липидному слою слезной пленки. В тоже время, результаты микроскопии препаратов криостатных срезов доказывают, что передний эпителий роговицы состоит из 5 клеточных слоев. Пятый – гомогенный слой состоит из уплотненных рядов безъядерных клеток. На его поверхности также присутствует тонкий мембраноподобный компонент. В научной литературе отсутствуют данные о мембраноподобном компоненте переднего эпителия. Это означает, что описание структуры переднего эпителия роговицы остается незавершенным. Цель исследования: получить данные о мембраноподобном компоненте переднего эпителия роговицы. Материал исследования - глаза свиньи домашней (Sus scrofa domesticus). Методы исследования - световая микроскопия. В результате исследования сагиттальных криостатных срезов роговицы и препаратов-отпечатков с поверхности роговицы визуализирован надэпителиальный слой переднего эпителия в виде неклеточного компонента по типу пленки. Основными элементами пленки являются микропузырьки, внешне напоминающие фрагменты клеток и апоптозные тельца. Мы обозначили неклеточный компонент термином «надэпителиальная пленка». Есть основания полагать, что она формируется в результате апоптоза поверхностных клеток переднего эпителия роговицы в условиях жидкой среды - слезной жидкости. По нашим сведениям, публикуемые данные являются первым сообщением о присутствии неклеточного компонента в виде пленки на поверхности переднего эпителия роговицы. Строение и свойства надэпителиальной пленки подлежат всестороннему исследованию для определения е е роли и значения в физиологии переднего эпителия. При обсуждении вопроса о природе интерференционных картин на поверхности роговицы, надэпителиальная пленка, присутствующая на границе раздела двух сред (твердой – передний эпителий и жидкой – слезная жидкость), по нашему мнению, может рассматриваться как материальная основа тонкопленочной интерференции.

1. Bron A, Tripathi R, Tripathi B. Wolff's Anatomy of the Eye and Orbit. 8th edition. Taylor & Francis. 1998.- Р.752

2. McTigue JW. The human cornea: a light and electron microscopic study of the normal cornea and its alterations in various dystrophies. Trans Am Ophthalmol Soc. 1967;65:591-660

3. Pfister RR. The normal surface of corneal epithelium: a scanning electron microscopic study. Invest Ophthalmol. 1973;12:654-668

4. Nichols B, Dawson CR, Togni B. Surface features of the conjunctiva and cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1983;24:570-576

5. Collin SP, Collin HB. A comparative SEM study of the vertebrate corneal epithelium. Cornea. 2000;19:218-30. https://doi.org/10.1097/00003226-200003000-00017

6. Fuks E. Uchebnik glaznykh bolezney. M., Gos. Med. Izd., 1933.- In Russian

7. Arkhangel'skiy VN. Mnogotomnoe rukovodstvo po glaznym boleznyam: V 2-kh kn. 1962.-S.346. In Russian

8. Mishima S. Some physiological aspects of the precorneal tear film. Arch Ophthalmol. 1965;73:233-241. https://doi.org/10.1001/archopht.1965.00970030235017

9. Wysenbeek YS, Loya N, Ben Siro I et al. The Effect of Sodium Hyoluronote on the Corneol Epithelium. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1998;29(2):194-199

10. Chen HB, Yamabayashi S, Ou B et al. Structure and composition of rat precorneal tear film. A study by an in vivo cryofixation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1997;38:381-387

11. Ohashi Y, Dogru M, Tsubota K. Laboratory findings in tear fluid analysis. Clin Chim Acta. 2006;369(1):17-28. https://doi.org/10.1016/j.cca.2005.12.035

12. Masoudi S. Biochemistry of human tear film: A review. Exp Eye Res. 2022;220:109101. https://doi.org/10.1016/j.exer.2022.109101

13. Golden MI, Meyer JJ, Zeppieri M et al. Dry Eye Syndrome. 2024. In: StatPearls [Internet-resourse]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; URL: https://www.researchgate.net/publication/380793871_Dry_Eye_Syndrome

14. Brzhevskiy VV, Somov EE. Rogovichno-kon’yunktival'ny kseroz (diagnostika, klinika, lechenie). S-Pb: Levsha. Sankt-Peterburg, 2003.- S. 5-12. In Russian

15. Mircheff AK. Lacrimal fluid and electrolyte secretion: a review. Curr Eye Res. 1989;8(6):607-17. https://doi.org/10.3109/02713688908995761

16. Mannis MJ, Holland EJ. Cornea: Fundamentals, Diagnosis and Management, 4th ed. New York: Elsevier, 2017.- P. 32

17. Tran CH, Routledge C, Miller J et al. Examination of murine tear film. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003;44:3520-3525. https://doi.org/10.1167/iovs.03-0178

18. McDonald JE. Surface phenomena of the tear film. Am J Ophthalmol. 1969;67:56-64. https://doi.org/10.1016/0002-9394(69)90008-7

19. Keill J. The anatomy of the human body, abridg'd: or, a short and full view of all the parts of the body. Together with their several uses drawn from their compositions and structures. London, 1747. P. 180. https://archive.org/details/bim_eighteenth-century_anatomy-of-the-humane-b_keill-james_1747/page/180/mode/2up?q=tears

20. Wolff E. The muco-cutaneous junction of the lidmargin and the distribution of the tear fluid. Trans Ophthalmol Soc UK. 1946;66:291–308

21. Cher I. Another way to think of tears: blood, sweat, and... «dacruon». Ocul Surf. 2007;5(3):251-254. https://doi.org/10.1016/s1542-0124(12)70615-8

22. Norn MS. Cytology of the precorneal film. Acta Ophthalmologica, 1960;38(2):67-71. https://doi.org/.1111/j.1755-3768.1960.tb00183.x

23. Ehlers N. The precorneal film. Biomicroscopical, histological and chemical investigations. Acta ophthalmol suppl. 1965; 81:19-34

24. Brauninger GE, Shah DO, Kaufman HE. Direct physical demonstration of oily layer on tear film surface. Am J Ophthalmol. 1972;73:132-134. https://doi.org/10.1016/0002-9394(72)90315-7

25. Holly FJ. Tear film physiology. Am J Optom Physiol Opt. 1980;57:252-257. https://doi.org/10.1097/00006324-198004000-00008

26. Zal'tsman M. Anatomiya i gistologiya chelovecheskogo glaza v normal'nom sostoyanii, ego razvitie i starenie.Izdatel'stvo Chikagskogo universiteta. 1912.-S.467. In Russian

27. Chen HB, Yamabayashi S, Ou B et al. Ultrastructural Studies on the Corneal Superficial Epithelium of Rats by in vivo Cryofixation with Freeze Substitution. Ophthalmic Research. 1995; 27(5), 286–295. https://doi.org/10.1159/000267738

28. Khomyakova NV. Osobennost' gistologicheskoy kartiny perednego epiteliya v kriostatnykh srezakh rogovitsy. Veterinariya i kormlenie. 2019;3:46-48. In Russian. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2019-3-14

29. Khomyakova NV. Mikroskopicheskoe issledovanie perednego epiteliya rogovitsy v eksperimente. Veterinariya i kormlenie. 2020;7:67-69. In Russian. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2020-7-18

30. Khomyakova NV. Struktura perednego epiteliya rogovitsy Sus scrofa domesticus pri kriofiksatsii. Morfologicheskie vedomosti. 2023;31(3):59-66. In Russian. https://doi.org/10.20340/mv-mn.2023.31(3).762

31. Camber O, Rehbinder C, Nikkila T et al. Morphology of the pig cornea in normal conditions and after incubation in a perfusion apparatus. Acta Vet Scand. 1987;28(2):127-134

32. Barros RC, Van Kooten TG, Veeregowda DH. Investigation of Friction-induced Damage to the Pig Cornea. Ocul Surf. 2015;13(4):315-320. https://doi.org/10.1016/j.jtos.2015.05.004

33. Abhari S, Eisenback M, Kaplan HJ et al. Anatomic Studies of the Miniature Swine Cornea. Anat Rec (Hoboken). 2018;301(11):1955-1967. https://doi.org/10.1002/ar.23890

34. Hammond GM, Young RD, Muir DD et al. The microanatomy of Bowman's layer in the cornea of the pig: Changes in collagen fibril architecture at the corneoscleral limbus. Eur J of Anat. 2020;24(5):399-406

35. Ehlers N. Morphology and histochemistry of the corneal epithelium of mammals. Cells Tissues Organs. 1970;75(2):161-198. https://doi.org/10.1159/000143448

36. Bülow N, Ehlers N. Morphology and dopa reaction of cultivated corneal epithelial cells. Acta Ophthalmologica. 2009;46(4):749-756. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.1968.tb02873.x

37. Podskochy A. Protective role of corneal epithelium against ultraviolet radiation damage. Acta Ophthalmol Scand. 2004;82(6):714-717. https://doi.org/10.1111/j.1600-0420.2004.00369.x7.

38. Podskochy A, Gan L, Fagerholm P. Apoptosis in UV-exposed Rabbit Corneas. Cornea. 2000;19(1):99–103. https://doi.org/10.1097/00003226-200001000-00019

39. Mallet JD, Dorr MM, Drigeard Desgarnier MC, et al. Faster DNA Repair of Ultraviolet-Induced Cyclobutane Pyrimidine Dimers and Lower Sensitivity to Apoptosis in Human Corneal Epithelial Cells than in Epidermal Keratinocytes. PLoS One. 2016;11(9):e0162212

40. Luchnikov EF, Abrosimov AJu. Gibel' kletki (apoptoz). Moskva: Meditsina; 2001.- 192s. In Russian