Иммуногистохимический профиль дермы при введении полимолочной кислоты

Регенерации кожи в случае ее повреждения при введении филлеров обусловлена возникающей при этом воспалительной реакцией дермы. Среди обширной группы филлеров, используемых в эстетической медицине, достаточно хорошо себя зарекомендовала полимолочная кислота, которая рекомендуется в качестве фактора, формирующего «живой каркас», индуцирующий синтез коллагена фибробластами с последующей трансформацией клеток этого типа в миофибробласты. Цель исследования – анализ иммуногистохимического статуса дермы при введении имплантата из полимолочной кислоты. Исследование выполнено на 30 крысах с субдермальным введением препарата в объеме 0,05 мл. Оценку результатов проводили спустя две недели, 1, 2 и 4 месяца после инъекции. Морфологическая оценка проведена в срезах, окрашенных гематоксилином и эозином, по Ван-Гизон и реакций Маллори и Массона. Иммуногистохимическое выявление коллагенов I и III типов проведено с использованием поликлональных антител. Для оценки статуса фибробластов использовали виментин, а для оценки макрофагов маркер CD68. Эффект ремоделирования экстрацеллюлярного матрикса изучали с помощью α-SMA актина. Показано, что ответная реакция дермы на имплантат носит фазный характер, начинается субклинической воспалительной реакцией с последующей инкапсуляцией каждой индивидуальной микросферы и завершается дермальной фиброплазией. Это приводит к эффекту увеличения объема ткани и результат достигается не только свойствами вводимого продукта, но и реакцией организма на его введение. Выявленная активация синтеза коллагена фибробластами может быть использована в качестве регулятора объема экстрацеллюлярного матрикса дермы.

1. Stein P, Vitavska O, Kind P, Hoppe W, Wieczorek H, Schurer NY. The biological basis for poly-L-lactic acid-induced augmentation. Journal of Dermatological Science. 2015;(78):26-33. DOI:org/10.1016/j.jdermsci.2015.01.012.

2. Meleshina AV, Bystrova AS, Rogovaya OS, Vorotelyak EA, Vasiliev AV, Zagaynova EV. Tissue - Engineered Skin Constructs and application of Stem Cells for Creation of Skin equivalents. STM. 2017;9(1):198-2018. DOI:10.17691/stm2017.9.1.24. DOI:org/10.17691/stm2017.9.1.24.

3. Kiernan JA. Histological and Histochemical Methods: Theory and Practice. 5th edition, Scion Publishing; 2015.571 p. https://DOI.org/10.5603/fhc.a2016.0007.

4. Junge K, Binnebosel M, Trotha K, Rosch R, Klinge U, Newmann U, Jansen P. Mesh biocompatibility: effects of cellular inflammation and tissue remodeling. Langenbecks Arch Surg. 2012;(397):255-270. DOI:10.1007/s00423-011-0780-0.

5. Orazov МR, Sulaeva ОN, Satrkova ЕYu. Patogeneticheskie mechanism regeneracii dermi posle implantacii nitei na оsnove polydioxanona. Moskovskiy chirurgicheskyi zhurnal. 2017;4(56):13-28.

6. Chang F. Shen Y. Ponnuswamy Mohanasundarametall. Vimentin coordinates fibroblast proliferation and keratinocyte differentiation in wound healing via TGF-β-Slug signaling. ProcNatlAcadSci USA. 2016;113(30):4320-4327. DOI:org/10.1073/pnas.1519197113.

7. Breithaupt A, Fitzgerald R. Collagen Stimulators Poly-L-Lactic Acid and Calcium Hydroxyl Apatite. Facial Plast Surg Clin North Am. 2015;23(4):459-69. DOI: 10.1016/j.fsc.2015.07.007.