РЕЗУЛЬТАТЫ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКОГО АНАЛИЗА СТЕНКИ МОЧЕВОГО ПУЗЫРЯ ПРИ ИНТЕРСТИЦИАЛЬНОМ ЦИСТИТЕ ИЛИ СИНДРОМЕ БОЛЕЗНЕННОГО МОЧЕВОГО ПУЗЫРЯ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

Этиология и патогенез синдрома болезненного мочевого пузыря или интерстициального цистита не до конца выяснена. Для лучшего понимания патогенеза заболевания созданы его экспериментальные модели на животных. Предполагается, что гистопатологические особенности воспалительной реакции стенки мочевого пузыря могут играть важную роль в прогнозирующем моделировании симптомов интерстициального цистита. Установлено, что в образцах препаратов мочевого пузыря при интерстициальном цистите наблюдается увеличение количества функционально активных тучных клеток, как частично, так и полностью дегранулированных. Однако убедительные доказательства того, что тучные клетки могут служить клеточными маркерами этого заболевания отсутствуют. Цель исследования - идентификация клеток воспаления в гистологических препаратах слизистой оболочки мочевого пузыря в 3-х экспериментальных моделях интерстициального цистита. Исследование проведено на 37 кроликах-самках. Экспериментальным животным вводили в полость мочевого пузыря протамин сульфат (1-я группа); в стенку мочевого пузыря мочу, взятую из мочевого пузыря (2-я группа); в стенку мочевого пузыря 0,9% раствор NaCl (3-я группа). 4-я группа животных была интактной. Через 14 дней после моделирования животных выводили из эксперимента, производили цистэктомию, готовили препараты стенки мочевого пузыря и гистологические срезы. Среднее число всех типов лейкоцитов в тканях стенки мочевого пузыря животных 1-й группы превышало таковое в остальных группах (р<0,001). Тучные клетки определялись в препаратах 1-й и 2-й групп, во 2-й группе их количество было в 25 раз выше, чем в 1-й группе (р<0,001). У животных 1-й группы отмечалась воспалительная инфильтрация стенки мочевого пузыря лимфоцитами и нейтрофилами. Во 2-й группе инфильтрация стенки мочевого пузыря клетками воспаления ассоциировалась с большим числом тучных клеток. В препаратах животных 3-й группы выявлялся отек, единичные лимфоциты и нейтрофилы. Полученные данные вносят определенный вклад в исследование и понимание механизмов воспалительных процессов при интерстициальном цистите.

мочевой пузырь, воспаление, интерстициальный цистит, синдром болезненного мочевого пузыря, экспериментальные модели, тучные клетки

1. McLennan MT. Interstitial cystitis: epidemiology, pathophysiology, and clinical presentation. Obstet. Gynecol. Clin. North Am. 2014;41:385–395. DOI: 10.1016/j.ogc.2014.05.004

2. Mirkin YaB, Karapetyan AV, Shumov SYu. Interstitsial'nyy tsistit: diskussiya o patogeneze, diagnostike i lechenii. Chast' 1 – patogenez. Eksperimental'naya i klinicheskaya urologiya. 2017;4:96-100.

3. Onopko VF, Kirilenko EA, Baranova EO, Golubeva VS. Interstitsial'nyy tsistit ili sindrom boleznennogo mochevogo puzyrya: sovremennyy vzglyad na problemu. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(1):65-69. https://doi.org/10.12737/21489

4. Birder L, Andersson K-E. Animal Modelling of Interstitial Cystitis/Bladder Pain Syndrome. Int Neurourol J. 2018;22:3-59. https://doi.org/10.5213/inj.1835062.531

5. Bjorling DE, Wang ZY, Bushman W. Models of inflammation of the lower urinary tract. Neurourol Urodyn. 2011;30:673–682. DOI: 10.1002/nau.21078

6. Buffington T, Ruggieri MR, Klumpp D. Interstitial cystitis: Animal models. In Bladder Pain Syndrome - An Evolution. Springer International Publishing. 2017:33-36. https://doi.org/10.1007/978-3-319-61449-6_6

7. Kwon W-A. Animal Model of Interstitial Cystitis/Bladder Pain Syndrome. Int Neurourol J. 2018;22:1-2. https://doi.org/10.5213/inj.1820edi.001

8. Fang Z, Xu K. Interstitial Cystitis/Bladder Pain Syndrome: a Review and an Update. Current Bladder Dysfunction Reports. 2016;11(4):391–398. https://doi.org/10.1007/s11884-016-0387-y

9. Liu H-T, Kuo H-C. Biomarkers for patients with interstitial cystitis/bladder pain syndrome. Urological Science. 2015;26(4):225-229. https://doi.org/10.1016/j.urols.2015.02.002

10. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th edition. Washington (DC): National Academies Press (US). The National Academies Collection: Reports funded by National Institutes of Health. 2011:246. DOI: https://doi.org/10.17226/12910

11. Sand PK. Proposed pathogenesis of painful bladder syndrome/interstitial cystitis. J Reprod Med. 2006;51(3):234-240.

12. Mutsaddi S, Kotrashetti VS, Nayak RS, Pattanshetty SM. Comparison of histochemical staining techniques for detecting mast cells in oral lesions. Biotech Histochem. 2019;15:1-10. https://doi.org/10.1080/10520295.2019.1597986

13. Bayrak O, Seckiner I, Solakhan M, Karakok M, Erturhan SM, Yagci F. Effects of intravesical dexpanthenol use on lipid peroxidation and bladder histology in a chemical cystitis animal model. Urology. 2012;79:1023–1026. DOI: 10.1016/j.urology.2012.01.025.

14. Wang X, Liu W, O'Donnell M, Lutgendorf S, Bradley C, Schrepf A, Liu L, Kreder K, Luo Y. Evidence for the Role of Mast Cells in Cystitis-Associated Lower Urinary Tract Dysfunction: A Multidisciplinary Approach to the Study of Chronic Pelvic Pain Research Network Animal Model Study. PLoS One. 2016;11(12):e0168772. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0168772

15. Sant GR, Kempuraj D, Marchand JE, Theoharides TC. The Mast Cell in Interstitial Cystitis: Role in Pathophysiology and Pathogenesis. Urology. 2007;69(4A):34-40.

16. Dahlin JS, Hallgren J. Mast cell progenitors: origin, development and migration to tissues. Mol. Immunol. 2015;63:9–17. DOI:10.1016/j.molimm.2014.01.018