Preview

Морфологические ведомости

Расширенный поиск

ВЛИЯНИЕ МАСЛЯНОЙ ОСНОВЫ РАСТВОРА РЕТИНОЛА ПАЛЬМИТАТА НА МОРФОЛОГИЮ ЭРИТРОЦИТОВ

https://doi.org/10.20340/mv-mn.2021.29(3).610

Полный текст:

Аннотация

Для объективной экспериментальной и клинической оценки действия ретинола и его эфиров на эритроциты требуется дополнительное выяснение их возможной реакции на вспомогательные вещества, присутствующие в масляных растворах этих соединений. Цель исследования - морфоденситометрический анализ эритроцитов крови животных, получавших масляную основу раствора ретинола пальмитата. Исследование выполнено на 12 крысах самцах Wistar весом 120 грамм, которым в течение 10 дней вводили через рот по 0,2 мл/сутки масляной основы, содержащей рапсовое масло и антиоксиданты – бутилгидрокситолуол и бутилгидроксианизол. Контрольной группой были 12 интактных крыс. Используя аппаратно-программный комплекс DiaMorph Cito (ЗАО «ДиаМорф», Россия), в окрашенных раствором Лейшмана мазках крови измеряли морфоденситометрические параметры эритроцитов (дискоцитов), позволяющие количественно оценить их морфофункциональное состояние у животных контрольной и экспериментальной групп. Установлено, что у крыс, потреблявших масляную основу, возникали изменения оптических и некоторых геометрических параметров эритроцитов. Наблюдалось увеличение интегральной оптической плотности цитоплазмы, а также кривизны нисходящего участка тора и длины профиля дискоцитов. Поскольку зрелые эритроциты лишены аппарата биосинтеза, увеличение интегральной оптической плотности их цитоплазмы в условиях потребления масляной основы следует рассматривать как появление в крови эритроцитов с большим, чем у интактных животных, количеством гемоглобина. Подобную реакцию эритрона можно предположительно рассматривать как результат воздействия компонентов масляной основы на процесс синтеза гемоглобина в эритробластах красного костного мозга. В результате изменения геометрии эритроцитов увеличились площадь их поверхности и ее соотношение с объемом клеток. На основании полученных результатов можно заключить, что потребление масляной основы, используемой для приготовления раствора ретинола пальмитата, вызывает незначительную по объему деформацию эритроцитов. Возникающие при этом изменения оптических и геометрических параметров эритроцитов предположительно способствуют повышению их газотранспортной и газообменной функций.

Об авторах

Татьяна Александровна Ломановская
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова, Москва
Россия

старший преподаватель кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования



Татьяна Владимировна Боронихина
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова, Москва
Россия

профессор, доктор медицинских наук, профессор кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования



Геннадий Александрович Пьявченко
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова, Москва
Россия

кандидат медицинских наук, старший преподаватель кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии 


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования



Александр Никодимович Яцковский
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова, Москва)
Россия

профессор, доктор медицинских наук, профессор кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии


Конфликт интересов:

Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования



Список литературы

1. Farag MR, Alagawany M, Erythrocytes as a biological model for screening of xenobiotics toxicity. Chemico-Biological Interactions. 2017;279:73-83. DOI: 10.1016/j.cbi.2017.11.007.

2. Parrow NL, Violet PC, Tu H, Nichols J, Pittman CA, Fitzhugh C, Fleming RE, Mohandas N, Tisdale JF, Levine M. Measuring Deformability and Red Cell Heterogeneity in Blood by Ektacytometry. J Vis Exp. 2018;(131):e56910. DOI: 10.3791/56910.

3. Asaro RJ, Zhu Q. Vital erythrocyte phenomena: what can theory, modeling, and simulation offer? Biomech Model Mechanobiol. 2020;19(5):1361-1388. DOI: 10.1007/s10237-020-01302-x.

4. Lamzin IM, Khayrullin RM. The quality assessment of stored red blood cells probed using atomic force microscopy. Anatomy Research International. 2014; Article ID 869683. DOI: 10.1155/2014/869683

5. Stolbovskaya OV, Khayrullin RM, Kulikova TK, Snezhkina AV, Sadritdinova A.F. Issledovanie vyazko-elasticheskikh svoystv tsitoplazmaticheskoy membrany limfotsitov krovi cheloveka metodom atomno-silovoy mikroskopii. Fundamental'nye issledovaniya. 2013;(4-5):1149-1152. In Russian.

6. Lamzin IM, Khayrullin RM. Issledovanie izmeneniy biofizicheskikh svoystv eritrotsitov pri khranenii v eritrotsitsoderzhashchikh sredakh s pomoshch'yu atomno-silovoy mikroskopii. Saratovskiy nauchno-meditsinskiy zhurnal. 2014;10(1):44-48. In Russian.

7. Park H, Lee S, Ji M, Kim K, Son Y, Jang S, Park Y. Measuring cell surface area and deformability of individual human red blood cells over blood storage using quantitative phase imaging. Scientific Reports. 2016;6(1):34257. DOI: 10.1038/srep34257.

8. Renoux C, Faivre M, Bessaa A, Da Costa L, Joly Ph, Gauthier A, Connes Ph. Impact of surface-area-to-volume ratio, internal viscosity and membrane viscoelasticity on red blood cell deformability measured in isotonic condition. Scientific Reports. 2019;9:6771. DOI: 10.1038/s41598-019-43200-y.

9. Instrukciya po ispol'zovaniyu lekarstvennogo preparata dlya medicinskogo primeneniya Retinola pal'mitat. «Retinoidy» Al'manah. 2014;33:7-10. URL: https://retinoids.ru/pub/edition/almanacs/ almanac-33.

10. Matthaus B, Özcan MM, Al Juhaimi F. Some rape/canola seed oils: fatty acid composition and tocopherols. Zeitschrift Für Naturforschung C. 2016;71(3-4):73–77. DOI: 10.1515/znc-2016-0003.

11. Garcia-Aloy M, Hulshof PJM, Estruel-Amades S, Osté MCJ, Lankinen M, Geleijnse JM, Andres-Lacueva C. Biomarkers of food intake for nuts and vegetable oils: an extensive literature search. Genes & Nutrition. 2019;14:7. DOI: 10.1186/s12263-019-0628-8.

12. Lee SM, Chung SH, Park Y, Park MK, Son YK, Kim SE, An WS. Effect of Omega-3 Fatty Acid on the Fatty Acid Content of the Erythrocyte Membrane and Proteinuria in Patients with Diabetic Nephropathy. International Journal of Endocrinology. 2015;208121:8. DOI: 10.1155/2015/208121.

13. Hals PA, Wang X, Piscitelli F, Di Marzo V, Xiao YF. The time course of erythrocyte membrane fatty acid concentrations during and after treatment of non-human primates with increasing doses of an omega-3 rich phospholipid preparation derived from krill-oil. Lipids Health Dis. 2017;16(1):16. DOI: 10.1186/s12944-017-0414-9.

14. Nagashree RS, Manjunath NK, Indu M, Ramesh M, Venugopal V, Sreedhar P, Pavithra N, Nagendra HR. Effect of a Diet Enriched with Fresh Coconut Saturated Fats on Plasma Lipids and Erythrocyte Fatty Acid Composition in Normal Adults. J Am Coll Nutr. 2017;36(5):330-334. DOI: 10.1080/07315724.2017.1280713.

15. Li H, Zhou X, Gao P, Li Q, Li H, Huang R, Wu M. Inhibition of lipid oxidation in foods and feeds and hydroxyl radical-treated fish erythrocytes: A comparative study of Ginkgo biloba leaves extracts and synthetic antioxidants. Anim Nutr. 2016;2(3):234-241. DOI: 10.1016/j.aninu.2016.04.007.

16. Weijers RNM. Membrane flexibility, free fatty acids, and the onset of vascular and neurological lesions in type 2 diabetes. Journal of Diabetes&Metabolic Disorders. 2015;15:1-13. DOI:10.1186/s40200-016-0235-9.

17. Kim OY, Lee SM, An WS. Impact of Blood or Erythrocyte Membrane Fatty Acids for Disease Risk Prediction: Focusing on Cardiovascular Disease and Chronic Kidney Disease. Nutrients. 2018;10(10):1454. DOI: 10.3390/nu10101454.

18. Mohandas N, Gallagher PG. Red cell membrane: past, present, and future. Blood. 2008;112(10):3939–3948. DOI: 10.1182/blood-2008-07-161166.

19. Van Doormaal JJ, Ideda IG, Muskiet FAJ, Martini IA, Doorenbos H. Effects of short-term high dose intake of evening primrose oil on plasma and cellular fatty acid compositions, α-tocopherol levels, and erythropoiesis in normal and Type 1 (insulin-dependent) diabetic men. Diabetologia. 1988;31(8):576–584. DOI:10.1007/bf00264763.

20. Stoeckel K, Bachmann L, Dobeleit G, Fuhrmann H. Response of plasma fatty acid profiles to changes in dietary n-3 fatty acids and its correlation with erythrocyte fatty acid profiles in dogs. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 2012;97(6):1142–1151. DOI:10.1111/jpn.12023.

21. Chen C, Wang P, Zhang Z, Ye Y, Zhuo S, Zhou Q, Zhang B. Effects of plant oils with different fatty acid composition on cardiovascular risk factors in moderately hypercholesteremic Chinese adults: a randomized, double-blinded, parallel-designed trial. Food&Function. 2020:35. DOI:10.1039/d0fo00875c.

22. Sinha A, Chu TT, Dao M, Chandramohanadas R. Single-cell evaluation of red blood cell bio-mechanical and nano-structural alterations upon chemically induced oxidative stress. Sci Rep. 2015;7(5):9768. DOI: 10.1038/srep09768.

23. Yehye WA, Rahman NA, Ariffin A, Abd Hamid SB, Alhadi AA, Kadir FA, Yaeghoobi M. Understanding the chemistry behind the antioxidant activities of butylated hydroxytoluene (BHT): a review. Eur J Med Chem. 2015;28(101):295-312. DOI: 10.1016/j.ejmech.2015.06.026.

24. Sánchez-Gallego JI, López-Revuelta A, Hernández-Hernández A, Sardina JL, López-Ruano G, Sánchez-Yagüe J, Llanillo M. Comparative antioxidant capacities of quercetin and butylated hydroxyanisole in cholesterol-modified erythrocytes damaged by tert-butylhydroperoxide. Food Chem Toxicol. 2011;49(9):2212-21. DOI: 10.1016/j.fct.2011.06.014.

25. Lomanovskaya TA, Boronihina TV, Yackovskij AN. Izmeneniya morfologii eritrocitov pri peredozirovke retinola pal'mitata. Operativnaya hirurgiya i klinicheskaya anatomiya. 2020;4(1):46-51. DOI: 10.17116/operhirurg2020401146.


Дополнительные файлы

Установлено, что у крыс, потреблявших масляную основу раствора ретинола пальмитата, возникают изменения мембраны эритроцитов косвенно свидетельствующие об  улучшении их газотранспортной и газообменной функций

Рецензия

Для цитирования:


Ломановская Т.А., Боронихина Т.В., Пьявченко Г.А., Яцковский А.Н. ВЛИЯНИЕ МАСЛЯНОЙ ОСНОВЫ РАСТВОРА РЕТИНОЛА ПАЛЬМИТАТА НА МОРФОЛОГИЮ ЭРИТРОЦИТОВ. Морфологические ведомости. 2021;29(3):48-54. https://doi.org/10.20340/mv-mn.2021.29(3).610

For citation:


Lomanvskaya T.A., Boronikhina T.V., P'yavchenko G.A., Yatskovsky A.N. THE EFFECT OF THE OIL BASE OF RETINOL PALMITATE SOLUTION ON RED BLOOD CELLS MORPHOLOGY. Morphological newsletter. 2021;29(3):48-54. (In Russ.) https://doi.org/10.20340/mv-mn.2021.29(3).610

Просмотров: 105


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1812-3171 (Print)
ISSN 2686-8741 (Online)