МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПРЕНАТАЛЬНОГО ПОТОМСТВА ОБЛУЧЕННЫХ ЭЛЕКТРОНАМИ ДОЗОЙ 2 ГРЕЯ И ПОЛУЧАВШИХ ОБОГАЩЕННУЮ ТРОМБОЦИТАМИ ПЛАЗМУ КРЫС-САМЦОВ

Одним из наиболее опасных влияний радиации на здоровье является расстройство репродуктивной функции, зачастую приводящее к бесплодию. Имеющиеся исследования по изучению воздействия излучения на сперматогенез и фертильность не рассматривали возможности применения восстановительной терапии. Одним из современных методов лечения бесплодия является введение аутологичной плазмы крови с повышенным содержанием тромбоцитов и нативных факторов роста. В настоящее время работы по исследованию потомства, полученного при применении этого метода лечения бесплодия и оценке его тератогенности отсутствуют. Цель исследования: морфологическое исследование потомства от крыс-самцов, облученных электронами в дозе 2 Гр и получавших обогащенную тромбоцитами плазму. Самцов крыс породы Wistar (n=35) однократно подвергали прицельному ионизирующему облучению на импульсном ускорителе электронов «NOVAC-11» дозой 2 Гр. Половине (n=15) из облученных животных в течение 12 недель вводили обогащенную тромбоцитами плазму и инсулиноподобный фактор роста-1, после чего самцов обеих групп подсаживали к интактным самкам (n=30) для получения потомства. Состояние развивающегося потомства оценивали путем морфологического анализа после выведения беременных самок из опыта на 20 сутки пренатального развития. Беременность наблюдалась только у самок, оплодотворенных самцами контрольной группы, и самцами, получавшими лечение обогащенной тромбоцитами плазмой. Использовались классические гистологические методы и рентгеновская компьютерная микротомография. В результате исследования установлено, что потомство контрольной и опытной групп макроскопически не отличались, при световой микроскопии существенных изменений их гистологического строения не выявлено. Патоморфологические изменения в развитии потомства самцов опытной группы, получавших обогащенную тромбоцитами плазму после облучения электронами дозой 2 Гр с помощью компьютерной микротомографии также не выявлены. Полученные данные свидетельствует об эффективности проведенного обогащенной тромбоцитами плазмой лечения бесплодия облученных животных, а также об отсутствии ее тератогенных эффектов.

1. Bansal MR et al. Spermatogenesis and epididymal sperm after scrotal gamma irradiation in adult rats. Reproductive Toxicology. 1990;4(4):321-324. DOI: 10.1016/0890-6238(90)90044-v

2. Paulsen CA. The study of radiation effects on the human testis: including histologic, chromosomal and hormonal aspects. Final progress report of AEC contract AT(45-1)-2225, Task Agreement 6. RLO-2225-2, 1973. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2013.08.010

3. Koruji M, Movahedin M, Mowla SJ et al. The morphological changes of adult mouse testes after 60Co gamma-Radiation. Iran Biomed J. 2008;12(1):35-42

4. Marzban M, Anjamshoa M, Jafari P et al. Effects of gamma rays on rat testis tissue according to the morphological parameters and immunohistochemistry: radioprotective role of silymarin. Electron Physician. 2017;9(6):4524-4532

5. Meistrich ML. Effects of chemotherapy and radiotherapy on spermatogenesis. Eur Urol. 1993;23:41-136

6. Brown SO. Effects of continuous low intensity radiation on successive generations of the albino rat. Genetics. 1964;50(5):1101

7. Hanafi N. Low doses of gamma radiation may impair testicular tissue in a rat treated CCl4 model: role of BM transplantation. J Biological Sciences. 2012;12(3):128-137. DOI: 10.3923/jbs.2012.128.137

8. Abuelhija M et al. Rat models of post‐irradiation recovery of spermatogenesis: interstrain differences. Andrology. 2013;1(2):206-215. DOI: 10.1111/j.2047-2927.2012.00034.x

9. Clifton DK, Bremner WJ. The effect of testicular X‐irradiation on spermatogenesis in man: A comparison with the mouse. Journal of andrology. 1983;4(6):387-392. DOI: 10.1002/j.1939-4640.1983.tb00765.x

10. Palyga GF i dr. Realizatsiya luchevykh effektov v ontogeneze potomstva dvukh pokoleny samtsov, polovye kletki kotorykh oblucheny odnokratno v nesterilizuyushchikh dozakh na stadii zrelykh spermatozoidov. Radiaciya i risk (Bulleten' Natsional'nogo radiatsionno-epidemiologicheskogo registra). 2010;19(4). In Russian

11. Dergilev AA, Chibisova OF, Palyga GF I dr. Vliyanie ioniziruyushchey radiatsii v nesterilizuyushchikh dozakh na embriogenez i postnatal''noe razvitie potomstva dvukh pokoleniy samtsov krys, polovye kletki kotorykh oblucheny na premeyoticheskikh stadiyakh spermatogeneza. Radiatsiya i risk. 2012;21(2):39-45. In Russian

12. Palyga GF, Chibisova OF, Ivanov VL. Posledstviya dlya reproduktivnoy funktsii odnokratnogo oblucheniya v nesterilizuyushchey doze antenatal'nykh i polovozrelykh yaichnikov krys Vistar. Radiatsiya i risk (Bulleten' Natsional'nogo raditscionno-epidemiologicheskogo registra). 2008;17(3). In Russian

13. Marx RE. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP? Implant dentistry. 2001;10(4):225-228. DOI: 10.1097/00008505-200110000-00002

14. Al-Nasser R, Khrait Z, Jamali S. The Effectiveness of Autologous Platelet-Rich Plasma (PRP) in the Therapy of Infertile Men with Non-Abstractive Azoospermia. J Reprod Med Gynecol Obstet. 2018;3(11). DOI:10.24966/RMGO-2574/100011

15. Bader R, Ibrahim J, Moussa M et al. In vitro effect of autologous platelet-rich plasma on H2O2-induced oxidative stress in human spermatozoa. Andrology. 2019;8(1):191-200

16. Griffeth RJ, Bianda V, Nef S. The emerging role of insulin-like growth factors in testis development and function. Basic Clin Androl. 2014;24(12). DOI: 10.1186/2051-4190-24-12

17. Yao J, Zuo H, Gao J et al. The effects of IGF-1 on mouse spermatogenesis using an organ culture method. Biochem Biophys Res Commun. 2017;491(3):840-847. DOI: 10.1016/j.bbrc.2017.05.125

18. Demyashkin GA. Vliyanie faktorov rosta na spermatogenez posle pritsel''nogo oblucheniya semennikov krys elektronami v doze 8 grey. Vestnik volgogradskogo gosudarstvennogo meditsinskogo universiteta. 2021;78(2):52-55. In Russian. DOI: 10.19163/1994-9480-2021-2(78)-52-55

19. Khan S, Adhikari JS, Rizvi MA, Chaudhury NK. Radioprotective potential of melatonin against 60Co γ-ray-induced testicular injury in male C57BL/6 mice. J Biomed Sci. 2015;22(61). DOI: 10.1186/s12929-015-0156-9

20. Jiang Z, Xu B, Yang M et al. Protection by Hydrogen Against Gamma Ray ‐Induced Testicular Damage in Rats. Basic Clin Pharmacol Toxic. 2012;113(3):186-191