СТРУКТУРА ПЕРЕДНЕГО ЭПИТЕЛИЯ РОГОВИЦЫ SUS SCROFA DOMESTICUS ПРИ КРИОФИКСАЦИИ
https://doi.org/10.20340/mv-mn.2023.31(3).762
Аннотация
Классическая гистологическая картина переднего эпителия роговицы, известная по результатам стандартной гистологической техники и световой микроскопии препаратов химически фиксированного материала, описывает наличие трех клеточных слоев: базального – герминативного, среднего и поверхностного. На препаратах криофиксированного материала над клетками третьего слоя определяется еще один гомогенный слой, который принято идентифицировать как прекорнеальную слезную пленку, то есть слой жидкости. Анализ и сопоставление известных данных позволяют обозначить научную проблему, которая заключается в следующем. Структура гомогенного слоя ранее не изучалась, строение его неизвестно, следовательно, идентификация гомогенного слоя с прекорнеальной слезной пленкой не обоснована. Мы предполагаем, что гистологическая картина переднего эпителия на препаратах химически фиксированного материала является неполной, а гомогенный слой является структурным компонентом переднего эпителия. Цель исследования: изучить структуру переднего эпителия и гомогенного слоя на препаратах криофиксированного материала. Материал исследования - кадаверные глаза свиньи домашней (Sus scrofa domesticus). Методы исследования - световая микроскопия. В результате исследования впервые установлено, что гомогенный слой является структурным компонентом переднего эпителия роговицы. Между гомогенным слоем и слоем плоских клеток переднего эпителия определяется еще один слой в виде микроскопически выявляемой тонкой полоски. С учетом установленного факта следует заключить, что передний эпителий роговицы состоит из пяти слоев. Клетки в слоях находятся в уплотненном состоянии, степень которого увеличивается от базальной мембраны к фронтальной поверхности эпителия, достигая максимума на уровне гомогенного слоя. Клетки поверхностного слоя безъядерные, заполнены оксифильной массой, предположительно кератином, что указывает на процесс ороговения эпителиоцитов. Результаты исследования подтвердили предположение о том, что гистологическая картина на препаратах химически фиксированного материала является неполной. Идентификация гомогенного слоя с прекорнеальной слезной пленкой безосновательна.
Об авторах
Наталья Васильевна ХомяковаРоссия
кандидат медицинских наук, врач-офтальмолог
Конфликт интересов:
Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования
Элеонора Леонидовна Колоскова
Россия
ведущий ветеринарный врач сектора серологии и лептоспироза
Конфликт интересов:
Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования
Иван Иванович Сидоров
Россия
заместитель директора
Конфликт интересов:
Автор заявляет об отсутствии каких-либо конфликтов интересов при планировании, выполнении, финансировании и использовании результатов настоящего исследования
Список литературы
1. Metz А. The Anatomy and Histology of the Human Eye. Philadelphia, 1868. URL: https://archive.org/details/anatomyhistology00metzuoft
2. Ehlers N. Morphology and histochemistry of the corneal epithelium of mammals. Cells Tissues Organs. 1970;75(2):161–198. DOI:10.1159/000143448
3. Bülow N, Ehlers N. Morphology and dopa reaction of cultivated corneal epithelial cells. Acta Ophthalmologica. 2009;46(4):749–56. DOI:10.1111/j.1755-3768.1968.tb02873.x
4. McTigue JW. The human cornea: a light and electron microscopic study of the normal cornea and its alterations in various dystrophies. Trans Am Ophthalmol Soc. 1967;65:591–660. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/4170533
5. DelMonte DW, Kim T. Anatomy and physiology of the cornea. J Cataract Refract Surg. 2011;37(3):588–598. DOI:10.1016/j.jcrs.2010.12.037
6. Mannis MJ, Holland EJ, et al. Cornea: Fundamentals, Diagnosis and Management, 4th ed. New York: Elsevier, 2017.- 2016pр
7. Pfister RR. The normal surface of corneal epithelium: a scanning electron microscopic study. Invest Ophthalmol. 1973;12:654–668. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/4582462/
8. Pearton DJ, Ferraris C, Dhouailly D. Transdifferentiation of corneal epithelium: Evidence for a linkage between the segregation of epidermal stem cells and the induction of hair follicles during embryogenesis. Intern J of Dev Biol. 2004;48(2-3):197–201. DOI:10.1387/ijdb.1527238510.1387/ijdb.15272385
9. Kao WW. Keratin expression by corneal and limbal stem cells during development. Exp Eye Res. 2020;200:108206. DOI:10.1016/j.exer.2020.108206
10. Chen HB, Yamabayashi S, Ou B, et al. Ultrastructural studies on the corneal superficial epithelium of rats by in vivo cryofixation with freeze substitution. Ophthalmic Res. 1995;27:286–295. DOI:10.1159/000267738.
11. Chen HB, Ou B, Yamabayashi S, et al. Ultrastructural study on rat precorneal tear film by the quick freezing freeze-substitution method. J Jpn Ophthalmol Soc. 1996;100:453–457. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8712077/
12. Mishima S. Some Physiological Aspects of the Precorneal Tear Film. Arch of Ophthalmol. 1965;73(2):233–241. DOI:10.1001/archopht.1965.00970030235017
13. Lemp M. The Precorneal Tear Film. Archives of Ophthalmology. 1970;83(1):89. DOI:10.1001/archopht.1970.00990030091017
14. Lemp MA. Perspective Advances in Understanding and Managing Dry Eye Disease. Am J of Ophthalmol. 2008;146(3):350–356. DOI:10.1016/j.ajo.2008.05.016
15. Lee WB, Holland EJ, Mannis MJ. Ocular Surface Disease: Cornea, Conjunctiva and Tear Film. New-York: Elsevier Health Sciences. 2013. 472 pp. DOI:10.1016/B978-1-4557-2876-3.00001-8
16. Chen HB, Yamabayashi S, Ou B, et al. Structure and composition of rat precorneal tear film. A study by an in vivo cryofixation. Invest. Ophthal. Vis. Scien.1997;38:381–387. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9040471/
17. Camber O, Rehbinder C, Nikkila T, et al. Morphology of the pig cornea in normal conditions and after incubation in a perfusion apparatus. Acta Vet Scand. 1987;28(2):127–134. DOI: 10.1186/BF03548232
18. Barros RC, Van Kooten TG, Veeregowda DH. Investigation of Friction-induced Damage to the Pig Cornea. The Ocular Surface, 2015;13(4):315–320. DOI:10.1016/j.jtos.2015.05.004
19. Abhari S, Eisenback M, Kaplan HJ, et al. Anatomic Studies of the Miniature Swine Cornea. Anat Rec (Hoboken). 2018 Nov;301(11):1955-1967. DOI: 10.1002/ar.23890
20. Hammond GM, Young RD, Muir DD, et al. The microanatomy of Bowman's layer in the cornea of the pig: Changes in collagen fibril architecture at the corneoscleral limbus. Eur J of Anat. 2020;24(5):399–406. URL: http://www.eurjanat.com/web/paper.php?id=200195gh
21. Oh JY, Kim MK, Lee HJ, et al. Processing porcine cornea for biomedical applications. Tissue Eng Part C Methods. 2009 Dec;15(4):635-645. DOI: 10.1089/ten
22. Yoeruek E, Bayyoud T, Maurus C, et al. Decellularization of porcine corneas and repopulation with human corneal cells for tissue-engineered xenografts. Acta Ophthalmol. 2012 Mar;90(2):e125-131. DOI:10.1111/j.1755-3768.2011.02261.x
23. Christophers E, Kligman AM. Visualization of the cell layers of the stratum corneum. J Invest Dermatol. 1964;42:407–409
Дополнительные файлы
Изучив структуру роговицы домашней свиньи на гистологических препаратах, полученных при криофиксации, авторы доказывают ее пятислойное строение в отличие от классической трехслойной структуры выявляемой на препаратах с химической фиксацией материала
Рецензия
Для цитирования:
Хомякова Н.В., Колоскова Э.Л., Сидоров И.И. СТРУКТУРА ПЕРЕДНЕГО ЭПИТЕЛИЯ РОГОВИЦЫ SUS SCROFA DOMESTICUS ПРИ КРИОФИКСАЦИИ. Морфологические ведомости. 2023;31(3):59-66. https://doi.org/10.20340/mv-mn.2023.31(3).762
For citation:
Khomyakova N.V., Koloskova E.L., Sidorov I.I. THE STRUCTURE OF THE ANTERIOR CORNEA EPITHELIUM OF THE SUS SCROFA DOMESTICUS AT THE CRYOPHIXATION. Morphological newsletter. 2023;31(3):59-66. (In Russ.) https://doi.org/10.20340/mv-mn.2023.31(3).762