ОСОБЕННОСТИ СТРУКТУРНОЙ ОРГАНИЗАЦИИ И МЕЖТКАНЕВЫХ ВЗАИМОДЕЙСТВИЙ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ И ПЕРИОСТА ПЕРЕДНЕЙ СТЕНКИ ВЕРХНЕЧЕЛЮСТНОЙ ПАЗУХИ

Изучение строения мукопериостеума передней стенки верхнечелюстной пазухи имеет важное клиническое значение для оториноларингологов, стоматологов и челюстно-лицевых хирургов. Из клинической практики хорошо известно о частой травматизации мукопериоста и его слабом регенераторном потенциале, однако отсутствует понимание основных механизмов, лежащих в их основе. Это объясняется отсутствием полной информации о структурной организации периоста со стороны верхнечелюстной пазухи и о наличии связей в составе между слизистой оболочкой и надкостничной структурой. Цель исследования: выявление особенностей структурной организации и межтканевых взаимодействий мукопериостеума передней стенки верхнечелюстной пазухи. В исследовании проанализированы образцы тканей 10 пациентов-мужчин второго зрелого возраста 38-56 лет, которым были проведены операции по удалению инородных тел из верхнечелюстных пазух доступом через ротовую полость. Фрагменты слизистой оболочки (мембраны Шнайдера) взяты с внутренней поверхности передней стенки верхнечелюстной пазухи. Проведено гистологическое исследование препаратов с окрасками гематоксилином и эозином и по Ван-Гизон, выполнена их общая морфометрия. В результате исследования установлено, что в периосте мембраны Шнайдера отсутствуют внутренний слой и кровеносные сосуды. Он представляет собой тонкий одиночный пучок коллагеновых волокон, который на отдельных участках связан посредствам перпендикулярных коллагеновых волокон с собственной пластинкой слизистой оболочки. По месту его залегания в кости, функциональным особенностям и особенностям строения периост Шнайдеровой мембраны можно расценивать как тканевой вариант эндоста. Проведенное исследование мукопериоста передней стенки верхнечелюстной пазухи показало, что он состоит из слоя респираторного эпителия и слоя рыхлой волокнистой соединительной ткани, границей этой мембраны является одиночная горизонтальная пластинка из уплотненного пучка коллагеновых волокон, прилежащего к кости. Наличие участков поперечных связей между собственной пластинкой слизистой оболочки и горизонтальным уплотненным пучком коллагеновых волокон, позволяет считать их единым структурно-функциональным комплексом.

1. Glück U. Die physiologische Bedeutung der Nasennebenhöhlen beim Menschen: Spekulationen seit 1800 Jahren. Schweiz Med Wochenschr. 1991;121(25):925-931

2. Zollikofer CP, Weissmann JD. A morphogenetic model of cranial pneumatization based on the invasive tissue hypothesis. Anat Rec (Hoboken). 2008;291(11):1446-1454. https://doi.org/10.1002/ar.20784

3. Shcherbakov DA, Ekimova AE, Simonov AV. Zakonomernosti razvitiya verkhnechelyustnoy pazukhi. Universitetskaya meditsina Urala. 2019;4(19):46-49. In Russian

4. Preuschoft H, Witte H, Witzel U. Pneumatized spaces, sinuses and spongy bones in the skulls of primates. Anthropol Anz. 2002;60(1):67-79

5. Baydik OD, Logvinov SV, Zubarev SG i dr. Stroeniye slizistoy obolochki verkhnechelyustnoy pazukhi v norme i pri odontogennykh perforativnykh sinusitakh. Morfologiya. 2011;139(2):49-54. In Russian

6. Takasu T, Ito H. Electron microscopic study of the epithelial cell of the mucosa of the maxillary sinus. Nihon Jibiinkoka Gakkai Kaiho. 1969;72(2):488-489. In Japanese

7. Kavuzlu A, Tatar EÇ, Karagöz T et al. The effects of the stem cell on ciliary regeneration of injured rabbit sinonasal epithelium. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2017;274(8):3057-3064. https://doi.org/10.1007/s00405-017-4595-7

8. Pokrovskaya EM, Krasnozhen VN, Polishchuk SA, Tsyplakov DZ. Sravnitel’noe issledovanie gistologicheskogo stroeniya slizistoy obolochki v norme, pri kistoznom porazhenii okolonosovykh pazukh i khronicheskom sinusite. Prakticheskaya meditsina.2023;21(2):58-62. In Russian

9. Monje A, Diaz KT, Aranda L et al. Schneiderian Membrane Thickness and Clinical Implications for Sinus Augmentation: A Systematic Review and Meta-Regression Analyses. J Periodontol. 2016;87(8):888-899. https://doi.org/10.1902/jop.2016.160041

10. Kim DM, Nevins M, Camelo M et al. Human histologic evaluation of the use of the dental putty for bone formation in the maxillary sinus: case series. J Oral Implantol. 2012;38(4):391-398. https://doi.org/10.1563/aaid-joi-d-11-00069

11. Ballon A, Landes CA, Zeilhofer HF et al. The importance of the primary reconstruction of the traumatized anterior maxillary sinus wall. J Craniofac Surg. 2008;19(2):505-509. https://doi.org/10.1097/scs.0b013e318163f2ea

12. Tomazic PV, Sommer F, Treccosti A et al. 3D endoscopy shows enhanced anatomical details and depth perception vs 2D: a multicentre study. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2021;278(7):2321-2326. https://doi.org/10.1007/s00405-020-06495-6

13. Hirata Y, Kino K, Nagaoka S et al. A clinical investigation of oro-maxillary sinus-perforation due to tooth extraction. Kokubyo Gakkai Zasshi. 2001;68(3):249-253. In Japanese. https://doi.org/10.5357/koubyou.68.249

14. Vishnyakov VV, Panin AM, Kharlamov AA. Rol’ patologii vnutrinosovykh struktur v razvitii oslozhneniy operatsii sinusliftinga. Rossiyskaya rinologiya. 2010;18(3):23-24. In Russian

15. Zubareva AA, Karpishchenko SA, Shavgulidze MA. Kliniko-luchevye osobennosti smeshannykh polipoznoy i polipozno-gnoynoy form khronicheskikh rinosinusitov v sochetanii s zubochelyustnoy patologiey. Consilium Medicum. 2021;23(3): 216-221. In Russian

16. Boyko NV. Kisty verkhnechelyustnoy pazukhi. Rossiyskaya rinologiya. 2019;27(4):204-208. In Russian

17. Khalitov RR, Krasnozhen VN, Shcherbakov DA, Tsyplakov DE. Nekotoryye patomorfologicheskie aspekty retentsionnoy kisty verkhnechelyustnoy pazukhi. Folia Otorhinolaryngologiae et Pathologiae Respiratoriae. 2020; 26(4):11-18

18. Tonna EA, Cronkite EP. Autoradiographic studies of cell proliferation in the periosteum of intact and fractured femora of mice utilizing DNA labeling with H3-thymidine. Proc Soc Exp Biol Med. 1961;107:719-21. https://doi.org/10.3181/00379727-107-26733

19. Hauge EM, Qvesel D, Eriksen EF et al. Cancellous bone remodeling occurs in specialized compartments lined by cells expressing osteoblastic markers. J Bone Miner Res. 2001;16(9):1575-82. https://doi.org/10.1359/jbmr.2001.16.9.1575

20. Arai F, Yoshihara H, Hosokawa K et al. Niche regulation of hematopoietic stem cells in the endosteum. Ann N Y Acad Sci. 2009;1176:36-46. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2009.04561.x

21. Taichman RS, Emerson SG. Human osteoblasts support hematopoiesis through the production of granulocyte colony-stimulating factor. J Exp Med. 1994 May 1;179(5):1677-1682. https://doi.org//10.1084/jem.179.5.1677

22. Bi LX, Simmons DJ, Hawkins HK et al. Comparative morphology of the marrow sac. Anat Rec. 2000;260(4):410-5. https://doi.org/10.1002/1097-0185(20001201)260:4<410::AID-AR110>3.0.CO;2-Z

23. Lyu M, Xu D, Zhang X, Yuan Q. Maxillary sinus floor augmentation: a review of current evidence on anatomical factors and a decision tree. Int J Oral Sci. 2023;15(1):41. https://doi.org/10.1038/s41368-023-00248-x

24. Monje A, Diaz KT, Aranda L et al. Schneiderian Membrane Thickness and Clinical Implications for Sinus Augmentation: A Systematic Review and Meta-Regression Analyses. J Periodontol. 2016;87(8):888-899. https://doi.org/10.1902/jop.2016.160041