RUSSIAN NATIONAL SCIENTIFIC ANATOMICAL JOURNAL

Preview

Morphological newsletter

Advanced search

The effect of dalarginum on the reparative regeneration of critical size calvarial defect in rats

https://doi.org/10.20340/mv-mn.2014.0(4):11-18

Abstract

The model of rat critical size calvarial defect in rats showed that the chronic introduction of dalarginum at 100 μg/kg in order to stimulate the δ-receptors yields a smaller increase in the percentage of mineralized bone than the combination of naloxone and dalarginum at 100 μg/kg and 0, 5 mg/kg. Comparing our data with those obtained in our previous work, we suggest that dalarginum stimulates proliferation and differentiation of osteoblast precursor cells.

About the Authors

A. V. Vasilyev
ФГБУ «НИИ морфологии человека» РАМН; ФГБУ «Медико-генетический научный центр» РАМН
Russian Federation


C. B. Bolshakova
ФГБУ «НИИ морфологии человека» РАМН
Russian Federation


References

1. Rosen H., Krichevsky A., Polakiewicz R.D., Benzakine S., and Bar-Shavit Z. Developmental regulation of proenkephalin gene expression in osteoblasts. //Mol Endocrinol. Nov 1995. Vol. 9(11) pp. 1621-31.

2. Keshet E., Polakiewicz R.D., Itin A., Ornoy A., and Rosen H. Proenkephalin A is expressed in mesodermal lineages during organogenesis. // EMBO J. Oct 1989. Vol. 8(10). pp. 2917-23.

3. Pérez-Castrillôn J.L., Olmos J.M., Gómez J.J., Barrallo A., Riancho J.A., Perera L., Valero C., Amado J.A., and Gonzâlez-Macfas J. Expression of opioid receptors in osteoblast-like MG-63 cells, and effects of different opioid agonists on alkaline phosphatase and osteocalcin secretion by these cells. // Neuroendocrinology. Sep 2000. Vol. 72(3). pp. 187-94.

4. Elhassan A.M., Lindgren J.U., Hultenby K., Bergström J., and Adem A. Methionine-enkephalin in bone and joint tissues. // J Bone Miner Res. Jan 1998. Vol. 13(1). pp. 88-95.

5. Судаков С.К., Судаков К.В. Церебральные механизмы опиатной зависимости // Клиническая наркология. 2003. No. 1. pp. 38-43.

6. Виноградов В.А. Опиоидный гексапептид - даларгин в патогенетической терапии заболеваний органов пищеварения. //Сов.медицина. 1988. № 10. С. 59-63.

7. Панькова Т.Д. Доказательства реализации стимулирующего эффекта даларгина на процесс клеточного деления через опиатные рецепторы. // Бюл.эксперим. биологии и медицины. 1990. Т. 110. № 7. С. 96-98.

8. Ганина С.С., Рагимов Ч.Р. Оценка эффективности лечения даларгином больных с флегмонами лица и шеи по показателям свободнорадикального окисления периферической крови // Стоматология. 1991. № 6. С. 28-30.

9. Тургунов Н.Т., Лаврищева Г.И. Влияние гексапептида даларгина на репаративные процессы в посттравматически изменённых тканях костей. // Медицинский журнал Узбекистана. 1989. С. 70-71.

10. Ляшев Ю.Д. Влияние опиоидных пептидов на репаративную регенерацию костной ткани. // Архив патологии. 2002. Т. 64. № 1. С. 6-8.

11. Полежаев Л.В. Регенерация путём индукции. Москва: Медицина, 1977.

12. Pellegrini G., Seol Y.J., Gruber R., and Giannobile W.V. Pre-clinical models for oral and periodontal reconstructive therapies. // J Dent Res. 2009. Vol. 88(12). pp. 1065-76.

13. Lee J.A., Ku Y., Rhyu I.C., Chung C.P., and Park Y.J. Effects of fibrin-binding oligopeptide on osteopromotion in rabbit calvarial defects. // J Periodontal ImplantSci. 2010. Vol. 40. No. 5. pp. 211-9.

14. Кулаков А.А., Григорьян А.С., Киселева Е.В., Хамраев Т.К., Филонов М.Р., Гатиев А.Б. Устранение критических костных дефектов с помощью биоинженерной конструкции на нерезорбируемой полимерной основе с использованием аутогенных мультипотентных строlgмальных клеток из жировой ткани. // Стоматология. 2010. № 3. С. 9-12.

15. Волков А.В., Васильев А.В., Рачинская О.А., Большакова Г.Б., Гольдштейн Д.В. Применение флуоресцентных меток для оценки регенерации костной ткани на модели критических дефектов теменных костей крыс с использованием адаптированного метода гистоморфометрии. // Клиническая и эксперементальная морфология. 2013. № 2. С. 73-80.

16. Васильев А.В., Большакова Г.Б. Характеристика неоостеогенеза на модели критического дефекта теменных костей крыс с помощью традиционной и трёхмерной морфометрии // Гены и клетки. В печати.

17. Millan M.J., Morris B.J. Long-term blockade of muopioid receptors suggests a role in control of ingestive behaviour, body weight and core temperature in the rat.//Brain Res. May 1988. Vol. 450(1-2). pp. 247-58.

18. Ардасенов А. В., Хугаева В. К., Александров П. Н. Микроциркуляторное русло кожи в условиях воспаления и коррекции методом лимфостимуляции. Москва: Научный Мир, 2004. 148 с.

19. Burr D.B., Allen M.R. Basic and Applied Bone Biology. Academic Press, 2013. 392 pp.

20. Parfitt A.M., Drezner M.K., Glorieux F.H., Kanis J.A., Malluche H., Meunier P.J., Ott S. M., and Recker R.R. Bone histomorphometry: standardization of nomenclature, symbols, and units. Report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee. // J BoneMinerRes. 1987. Vol. 2. No. 6. pp. 595-610.

21. Dempster D.W., Compston J.E., Drezner M.K., Glorieux F.H., Kanis J.A., Malluche H., Meunier P.J., Ott S.M., Recker R.R., and Parfitt A.M. Standardized nomenclature, symbols, and units for bone histomorphometry: a 2012 update of the report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee. // Journal of bone and mineral research : the official journal of the American Society for Bone and Mineral Research. 2013. Vol. 28(1). pp. 2-17.

22. Васильев А.В., Бухарова Т.Б., Волков А.В., Вихрова Е.Б., Большакова Г.Б., and Гольдштейн Д.В. Влияние даларгина на пролиферацию мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, дермальных фибробластов и клеток остеосаркомы человека in vitro // Гены и клетки. В печати.


Review

For citations:


Vasilyev A.V., Bolshakova C.B. The effect of dalarginum on the reparative regeneration of critical size calvarial defect in rats. Morphological newsletter. 2014;22(4):11-18. (In Russ.) https://doi.org/10.20340/mv-mn.2014.0(4):11-18

Views: 302


Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1812-3171 (Print)
ISSN 2686-8741 (Online)