СТРУКТУРА ЭПИДЕРМИСА МОДЕЛИ АТРОФИЧЕСКОГО РУБЦА ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЛЕЧЕНИИ БИОКОМПОЗИТОМ С ФАКТОРОМ РОСТА ЭНДОТЕЛИЯ СОСУДОВ

Эпидермис, являясь объектом терапевтического воздействия в модели атрофического рубца, представляет его ключевую структуру, находящуюся под контролем ростовых факторов и, в частности, фактора роста эндотелия сосудов. Многочисленные исследования продемонстрировали эффективность в терапии атрофических рубцов эпидермального ростового фактора, а также обогащенной тромбоцитами плазмы. В ряде исследований было показано, что фактор роста эндотелия сосудов также обладает значительным спектром эффектов способных оказать лечебный эффект на атрофический эпидермис, увеличивая его толщину и ускоряя пролиферацию кератиноцитов. Цель исследования - изучить морфологические характеристики эпидермиса в модели атрофического рубца при экспериментальном лечении биокомпозитом с фактором роста эндотелия сосудов. Исследование проведено на 36 самцах крыс Вистар. Животные были распределены на 6 групп: 1-я – интактные животные, 2-я группа – контрольная группа с моделью атрофического рубца, в 3-й группе производилось экспериментальное лечение гелем на основе гидроокиси алюминия, в 4-й группе – экспериментальное лечение силиконовым гелем, 5-й группе – экспериментальное лечение фактором роста эндотелия сосудов и 6-й группе – экспериментальное лечение биокомпозитом на основе гидроокиси алюминия и фактором роста эндотелия сосудов. В исследуемой экспериментальной модели были получены данные об атрофии эпидермиса, снижении частоты митозов и сглаживании его поверхности. Под воздействием неорганических гелей эти изменения частично нивелировались, в большей степени под воздействием гидроокиси алюминия, который был выбран в качестве основы, на которой изготавливался биокомпозит. Статистически достоверный рост толщины эпидермиса отмечен при экспериментальном лечении фактором роста эндотелия сосудов в 5-й группе животных, кроме того, при экспериментальном лечении биокомпозитом наблюдалось увеличение количества Ki-67+ кератиноцитов. Таким образом, биокомпозитный материл на основе гидроокиси алюминия и фактора роста эндотелия сосудов обладает способностью сочетать эффекты своих компонентов и является перспективным препаратом для дальнейших исследований.

1. Long T, Gupta A, Ma S, Hsu S. Platelet-rich plasma in noninvasive procedures for atrophic acne scars: A systematic review and meta-analysis. J Cosmet Dermatol. 2020;19(4):836-844. https://doi.org/10.1111/jocd.13331

2. Nilforoushzadeh MA, Heidari-Kharaji M, Alavi S et al.Transplantation of autologous fat, stromal vascular fraction (SVF) cell, and platelet-rich plasma (PRP) for cell therapy of atrophic acne scars: Clinical evaluation and biometric assessment. J Cosmet Dermatol. 2022;21(5):2089-2098. https://doi.org/10.1111/jocd.14333

3. Stoddard MA, Herrmann J, Moy L, Moy R. Improvement of Atrophic Acne Scars in Skin of Color Using Topical Synthetic Epidermal Growth Factor (EGF) Serum: A Pilot Study. J Drugs Dermatol. 2017;16(4):322-326

4. Connolly D, Vu HL, Mariwalla K, Saedi N. Acne Scarring-Pathogenesis, Evaluation, and Treatment Options. J Clin Aesthet Dermatol. 2017;10(9):12-23

5. Seidel R, Moy RL. Improvement in Atrophic Acne Scars Using Topical Synthetic Epidermal Growth Factor (EGF) Serum: A Pilot Study. J Drugs Dermatol. 2015;14(9):1005-1010

6. Zhu JW, Wu XJ, Lu ZF et al. Role of VEGF receptors in normal and psoriatic human keratinocytes: evidence from irradiation with different UV sources. PLoS One. 2013;8(1):e55463. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0055463

7. Iglin VA, Sokolovskaya OA, Morozova SM et al. Effect of Sol-Gel Alumina Biocomposite on the Viability and Morphology of Dermal Human Fibroblast Cells. ACS Biomater Sci Eng. 2020;6(8):4397-4400. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.0c00721

8. Gafarov TU, Yenikeyev DA, Idrisova LT et al. Modelirovanie atroficheskogo rubtsovogo defekta kozhi u laboratornykh zhivotnykh. Uspekhi sovremennogo yestestvoznaniya.2013;6:89-91

9. Fabbrocini G, Annunziata MC, D'Arco V et al. Acne scars: pathogenesis, classification and treatment. Dermatol Res Pract. 2010;2010:893080. https://doi.org/10.1155/2010/893080

10. Fu RH, Wang YC, Liu SP et al. Differentiation of stem cells: strategies for modifying surface biomaterials. Cell Transplant. 2011;20(1):37-47. https://doi.org/10.3727/096368910X532756

11. Le Roux AL, Quiroga X, Walani N et al. The plasma membrane as a mechanochemical transducer. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 2019;374:20180221. https://doi.org/10.1098/rstb.2018.0221

12. Khatau SB, Kim DH, Hale CM et al. The perinuclear actin cap in health and disease. Nucleus. 2010;1(4):337-342. https://doi.org/10.4161/nucl.1.4.12331

13. Coscoy S, Baiz S, Octon J, Rhoné B et al. Microtopographies control the development of basal protrusions in epithelial sheets. Biointerphases. 2018;13(4):041003. https://doi.org/10.1116/1.5024601

14. Kim SA, Ryu YW, Kwon JI et al. Differential expression of cyclin D1, Ki 67, pRb, and p53 in psoriatic skin lesions and normal skin. Mol Med Rep. 2018;17(1):735-742. https://doi.org/10.3892/mmr.2017.8015